一、长春花愈伤组织诱导（论文文献综述）
贾鸿儒,任俞新,牛晓钰[1]（2020）在《长春花愈伤组织诱导研究》文中研究说明以长春花幼嫩顶芽与茎段为外植体,研究了不同灭菌剂及处理时间对外植体的灭菌效果及外植体材料对愈伤组织诱导的影响。结果表明,长春花顶芽为外植体,用75%酒精灭菌30 s+0.1%升汞灭菌300 s效果较好,此条件下外植体污染率为5.5%、褐变率为9.3%。愈伤组织诱导培养基以MS+3.0 mg/L 6-BA+2.0 mg/L 2,4-D效果较好,诱导率可达86.6%。以长春花顶芽为外植体时产生愈伤组织的时间较旱,出愈率为92.6%,愈伤组织团块大、致密,表面有小疣突,预期有较好的不定芽分化能力。
杨静怡,王燕燕,于放[2]（2020）在《长春花不同细胞培养物中一氧乙酰化地马地宁的水解过程》文中研究说明为研究不同长春花培养细胞中不同的次级代谢过程。以长春花的茎、根、花、叶及毛状根为外植体,培育不同的长春花愈伤组织进行悬浮培养,并测定通光率,筛选细胞进行培养。通过HPLC和实时荧光定量PCR对培养细胞的单萜吲哚生物碱的积累量及一氧乙酰化地马地宁的两个水解酶CrHL1和CrHL2的相对表达量进行对比分析。结果表明,茎、根、花及叶诱导的悬浮细胞比愈伤组织中长春质碱的积累量分别提高了113.5%、137.3%、157.5%和190.9%,而毛状根诱导的悬浮细胞比愈伤组织中积累量减少了25.1%。不同培养物中一氧乙酰化地马地宁的水解酶的表达量的变化趋势与长春质碱积累量呈现正相关,并均受愈伤组织悬浮培养的影响。
李一文,高明波,禹潇倩,王闻笛,韦胜,李政[3]（2019）在《长春花愈伤组织诱导及长春质碱的提取研究》文中指出用长春花叶片为外植体诱导愈伤组织,培养基及激素的选择分为以下四组:1. 0 mg/L 6-BA+1. 0 mg/L NAA;1. 0 mg/L 6-BA+0. 5 mg/L 2,4-D; 2. 0 mg/L 6-BA+0. 5 mg/L NAA+0. 5 mg/L 2,4-D; 0. 5 mg/L KT+1. 0 mg/L 2,4-D1。在四组培养基中筛选得到最优培养基为1. 0 mg/L 6-BA+0. 5 mg/L 2,4-D。同时以长春花为材料,通过超声波提取法进行长春质碱的提取,同时进行HPLC测定。筛选得到最优提取条件为:以长春花叶片为提取材料、95%乙醇超声90 min。HPLC测得提取所得长春质碱含量为3. 26 mg/g。
宋晓兵,彭埃天,陈霞,凌金锋,张炼辉[4]（2016）在《柑橘黄龙病寄主长春花愈伤组织的诱导与增殖》文中指出以柑橘黄龙病寄主长春花为试材,研究建立长春花的组织培养体系。取长春花幼嫩叶片为外植体,进行外植体的消毒处理及不同激素的配方筛选,建立长春花愈伤组织诱导及增殖培养体系。试验表明外植体消毒处理组合为75%乙醇处理3045 s,0.1%氯化汞处理3 min;培养基为MS基本培养基,愈伤组织诱导的激素组合:2,4-D1.0 mg·L-1+NAA 1.0 mg·L-1+6-BA 2.0 mg·L-1,愈伤组织增殖的激素组合:NAA 1.0 mg·L-1+6-BA 2.0mg·L-1,长春花愈伤组织诱导率达到90%以上。建立了长春花愈伤组织诱导及增殖培养体系,对利用转基因工程技术抗病育种从而控制柑橘黄龙病具有重要意义。
侯小龙,郑亚菲,伍春莲[5]（2015）在《均匀设计实验对长春花愈伤组织诱导条件的优化》文中研究说明以长春花无菌苗的幼嫩叶片为外植体,利用均匀设计试验方法,建立不同的激素组合,找出最适合的激素配比,优化长春花愈伤组织培养体系.并研究不同条件下长春花愈伤组织的诱导情况,对长春花愈伤组织培养体系进行优化.发现长春花愈伤组织诱导的最佳激素配比为:MS+2.0mg/L 6-BA+1.0mg/L 2,4-D.Vc可以有效地抑制褐化.另外,对长春花丛生芽的诱导作了初步研究,在MS+2.0mg/L 6-BA+0.3mg/L NAA中,以长春花顶芽为外植体诱导丛生芽,效果甚佳.
刘洁云[6]（2013）在《长春花组织培养与扦插繁殖技术研究》文中提出本论文以红色长春花种子和盆栽植株为试验材料,从长春花无菌芽诱导增殖、愈伤组织诱导与芽分化、组培苗生根诱导及枝条扦插生根四个方面进行研究。研究了0.1%HgCl2、10%NaClO对长春花种子消毒灭菌的影响；基本培养基种类对长春花无菌芽诱导增殖及生根的影响；生长调节剂种类、浓度及配比对长春花无菌芽增殖、愈伤组织诱导与芽分化、组培苗生根、插穗生根的影响；取材部位对长春花愈伤组织诱导、芽分化以及插穗生根的影响：愈伤组织诱导培养基中激素的含量对愈伤组织芽分化的影响；基质成分对长春花组培生根苗移栽的影响；激素溶液浸泡时间对长春花插穗生根的影响。主要研究结果如下：1.0.1%HgCl2和10%NaClO两种灭菌剂各时间处理,其中以10%NaClO为灭菌剂,灭菌时间10min对长春花种子消毒灭菌效果最佳。根据长春花无菌芽诱导增殖各处理结果,最佳芽增殖诱导培养基为：MS+6-BA3.0mg/L+NAA0.2mg/L+TDZ0.02mg/L2.本试验中,三个愈伤组织诱导部位以1/3叶片+叶柄为最好,各愈伤组织诱导培养基以MS+2,4-D1.0mg/L+TDZ0.02mg/L最佳。愈伤组织诱导部位和诱导培养基影响愈伤组织的芽分化,其中,以1/3叶片+叶柄在MS+2,4-D0.5mg/L+KT0.5mg/L培养基上诱导出的愈伤组织芽分化效果最好。本试验的最佳芽分化培养基为：MS+NAA0.2mg/L+6-BA2.0mg/L+KT2.5mg/L。3.在培养基中添加适量活性炭有利于长春花组培苗生根,各组培苗生根诱导处理的最佳培养基为：1/2MS+ABT-61.0mg/L+PP3330.5mg/L+活性炭600mg/L。三种移栽基质以泥炭+珍珠岩+菜园土（1：1：1）为组培生根苗最佳移栽基质。4.以长春花长枝的上、中、下三个部位进行扦插繁殖,最佳取穗部位为长枝的中部。本试验对长春花插穗进行激素处理,以在ABT-650mg/L+NAA15mg/L溶液中浸泡9h为宜。
曾智发,柳润辉[7]（2012）在《长春花组织培养研究进展》文中指出长春花含有100多种吲哚类生物碱,具有抗肿瘤、降血压等多种生物活性,有较高的药用价值,但是含量偏低。长春花组织培养可从提高繁殖系数、调控次生代谢产物的累积等来提高长春花生物碱类成分含量。本文就外植体和培养基的选择、药用成分累积的影响因素、悬浮细胞培养应用、影响毛状根因素和基因工程技术应用等方面,综述了长春花组织培养的主要研究进展,为进一步开发利用长春花药物资源提供参考。
龚一富,王何瑜,卢鹏,袁泉,王桂林,刘建军[8]（2012）在《长春花毛状根再生植株的获得及抗癌生物碱的产生》文中研究说明目的建立长春花转基因毛状根再生植株快速繁育体系,获得生物碱量提高的长春花再生植株。方法研究外源植物生长调节剂对长春花毛状根愈伤组织诱导、不定芽分化、不定根分化和再生植株移栽的影响,采用HPLC法测定长春花再生植株生物碱量,并采用定量PCR技术分析目的基因的表达情况。结果转基因长春花毛状根愈伤组织诱导和不定芽诱导的最佳培养基均是MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.3 mg/L,不定根分化的最适培养基是1/2 MS+NAA 0.3 mg/L。采用炼苗的改进方法可使长春花再生植株的移栽成活率达90%。HPLC分析结果表明,长春花再生植株中长春碱、长春新碱和阿吗碱量分别比对照提高4.0、5.8、1.8倍,其中,优良单株OG30-3的长春新碱和长春碱量比对照提高7倍和10倍。定量PCR分析结果表明,转基因植株orca3基因和g10h基因的表达量比非转基因植株的高。结论转基因长春花毛状根再生植株可促进抗癌生物碱的产生。
侯恩太[9]（2011）在《小蔓长春花药用成分长春胺的分离精制工艺及其组织培养研究》文中提出小蔓长春花中含有多种相似的单萜吲哚类生物碱,长春胺为其中主要的一种单萜吲哚生物碱。作为脑血管扩张剂,长春胺能使冠状动脉血流量增加,并选择性地作用于脑小血管和毛细血管,对心脑血管循环不全所引起的各类疾病和功能障碍有治疗、改善作用。本研究在实验室历年工作的基础之上,进一步对小蔓长春花中长春胺的提取、分离纯化、精制工艺以及HPLC分离体系进行优化研究,以期建立小蔓长春花中长春胺的生产工艺。同时,展开对小蔓长春花的组织培养研究,寻求植物组织培养生产长春胺的途径。主要研究结果如下：1、采用二极管阵列检测器,在比对保留时间的基础上,加以光谱确认,对测定长春胺流动相体系进行筛选优化,建立了目前测定小蔓长春花中长春胺的最佳流动相体系：甲醇-1%二乙胺（pH7.5）（65：35,v/v）。2、根据文献报道的生物碱提取方法,对小蔓长春花中长春胺提取工艺进行优化,确立了目前最优提取方法。同时测定了不同产地、不同采收季节样品中长春胺含量,发现种植地对小蔓长春花中长春胺含量影响显着,在不同年龄的同一采收期和同一年龄的不同采收期之间,植株的长春胺含量有较大差异。3、选用AB-8大孔吸附树脂作为分离载体,乙醇为洗脱体系对长春胺进行初步分离纯化,建立其最佳工艺为：上柱后去离子水洗脱5 BV,60%乙醇洗脱5 BV,90%乙醇洗脱5 BV,合并90%乙醇洗脱液浓缩到一定体积备用。4、同时结合高速逆流色谱技术对AB-8大孔吸附树脂纯化后的长春胺进一步纯化精制,筛选确立高速逆流色谱条件为：氯仿-甲醇-0.3mol/L HCl（4：3：2,v/v）体系为两相溶剂体系,上相为固定相,下相为流动相,流动相流速为2.0 mL/min,检测波长为280 nm。经高速逆流色谱纯化后长春胺纯度为80.2%。5、建立了小蔓长春花无菌培养体系,其叶、茎、根诱导愈伤组织形成的优化培养基为MS+1.0 mg/L 2,4-D+1.0 mg/L 6-BA+2.0 mg/L NAA,愈伤组织继代培养基为：B5+2.0 mg/L NAA+2.0 mg/L 2,4-D。同时,检测了各组织培养材料中长春胺含量。
侯恩太,王英娟,李多伟,李娜,陈洪栋,步怀宇[10]（2011）在《珍稀药材小蔓长春花组织培养及长春胺含量的测定》文中研究表明目的:研究不同植物生长物质配比对小蔓长春花叶、茎、根愈伤组织诱导的影响,及各生长期无菌植株、愈伤组织中长春胺含量差异。方法:以小蔓长春花无菌苗的叶、茎、根为材料,采用正交设计实验研究2,4-D,6-BA,NAA对小蔓长春花愈伤组织诱导的影响。在无菌植株生长20,40,60 d,愈伤组织形成高峰期30 d,继代培养30 d时,采用HPLC分别对其中的长春胺含量测定,实验数据进行统计分析。结果:培养基中添加的6-BA,NAA对小蔓长春花叶、茎、根愈伤组织的诱导、生长无显着影响,而2,4-D则影响显着。无菌植株生长20,40,60 d时,长春胺分别为（0.015±0.003）%,（0.097±0.001）%,（0.113±0.06）%;诱导培养、继代培养至30 d时,小蔓长春花叶、茎、根愈伤组织长春胺分别为（0.024±0.002 5）%,（0.016±0.001 5）%,（0.010±0.001 5）%,（0.041±0.002）%,（0.019±0.001）%,（0.016±0.002）%。结论:诱导小蔓长春花叶、茎、根愈伤组织形成的最适培养基为MS+2,4-D 1.0 mg.L-1+6-BA 0.5 mg.L-1+NAA 0.5 mg.L-1。不同生长期无菌植株中长春胺含量差异显着,源于不同外植体的愈伤组织中的长春胺含量不同,其中叶诱导的愈伤组织长春胺含量显着高于茎、根产生的愈伤组织。
二、长春花愈伤组织诱导（论文开题报告）
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
三、长春花愈伤组织诱导（论文提纲范文）
（1）长春花愈伤组织诱导研究（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 供试材料 |
| 1.2 试验方法 |
| 1.2.1 外植体的制备 |
| 1.2.2 培养条件 |
| 1.2.3 愈伤组织培养 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 灭菌剂及处理时间对外植体灭菌效果的影响 |
| 2.2 不同激素配比对愈伤组织诱导的影响 |
| 2.3 不同外植体材料对愈伤组织诱导的影响 |
| 3 小结与讨论 |
（2）长春花不同细胞培养物中一氧乙酰化地马地宁的水解过程（论文提纲范文）
| 0 引 言 |
| 1 试 验 |
| 1.1 材料与试剂 |
| 1.2 方 法 |
| 1.2.1 长春花无菌苗的培养 |
| 1.2.2 不同长春花细胞培养物的诱导 |
| 1.2.3 不同组织长春花悬浮细胞的诱导 |
| 1.2.4 悬浮细胞生长量的测定 |
| 1.2.5 长春花细胞培养物的次级代谢产物的检测 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 长春花悬浮培养细胞的生长曲线 |
| 2.2 长春花不同培养物中CrHL1和CrHL2的反转录鉴定 |
| 2.3 长春花不同培养物中CrHL1和CrHL2的相对表达量 |
| 2.4 长春花不同培养物中生物碱的积累量 |
| 3 结论与讨论 |
（3）长春花愈伤组织诱导及长春质碱的提取研究（论文提纲范文）
| 1 实验 |
| 1.1 长春花愈伤组织诱导 |
| 1.2 提取长春质碱 |
| 1.2.1 实验材料 |
| 1.2.2 实验药品 |
| 1.2.3 实验仪器 |
| 1.2.4 单因素实验 |
| (1)长春花提取部位 |
| (2)长春花质碱提取溶剂 |
| (3)提取时间 |
| 1.2.5 长春质碱HPLC测定 |
| (1)色谱条件 |
| (2)样品处理 |
| (3)实验结果与计算 |
| 2 结果与讨论 |
| 2.1 培养基组合对长春花愈伤组织诱导、诱导率的影响 |
| 2.2 不同因素对长春质碱提取的影响 |
| 2.3 不同提取溶剂对长春质碱提取的影响 |
| 3 结论 |
（4）柑橘黄龙病寄主长春花愈伤组织的诱导与增殖（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 方法 |
| 1.2.1 培养基及激素的选择 |
| 1.2.2 外植体处理 |
| 1.2.3 愈伤组织的诱导 |
| 1.2.4 愈伤组织的增殖 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 外植体的选择及处理 |
| 2.2 愈伤组织形成 |
| 2.3 愈伤组织的增殖 |
| 3 讨论 |
| 3.1 外植体的消毒处理 |
| 3.2 激素的选择 |
| 3.3 激素的用量 |
| 3.4 研究意义 |
（6）长春花组织培养与扦插繁殖技术研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 英文缩略词表 |
| 1 前言 |
| 1.1 长春花的生物学特性 |
| 1.1.1 长春花的形态特征及分布 |
| 1.1.2 长春花的生长习性 |
| 1.2 长春花的应用价值 |
| 1.2.1 观赏价值 |
| 1.2.2 药用价值 |
| 1.3 长春花生物碱药物研究 |
| 1.3.1 长春花类药物抗肿瘤作用机理 |
| 1.3.2 生物碱在长春花植株中的分布 |
| 1.4 长春花组织培养研究进展 |
| 1.4.1 基本培养基与外植体的选择对组织培养的影响 |
| 1.4.2 植物生长调节物质对组织培养的影响 |
| 1.5 植物扦插繁殖研究进展 |
| 1.5.1 取穗部位的选择对扦插繁殖的影响 |
| 1.5.2 植物生长调节物质对扦插繁殖的影响 |
| 1.6 本研究的目的和意义 |
| 2 试验材料与方法 |
| 2.1 试验材料 |
| 2.1.1 长春花无菌芽诱导增殖试验材料 |
| 2.1.2 长春花愈伤组织诱导与分化试验材料 |
| 2.1.3 长春花组培苗生根与移栽试验材料 |
| 2.1.4 长春花扦插生根试验材料 |
| 2.2 试验药品与仪器设备 |
| 2.2.1 试验药品 |
| 2.2.2 仪器设备 |
| 2.3 试验方法 |
| 2.3.1 培养基制备 |
| 2.3.2 培养条件 |
| 2.3.3 基质制备 |
| 2.3.4 种子消毒灭菌试验方法 |
| 2.3.5 无菌芽继代增殖试验方法 |
| 2.3.6 愈伤组织诱导试验方法 |
| 2.3.7 愈伤组织分化试验方法 |
| 2.3.8 组培苗生根诱导试验方法 |
| 2.3.9 组培生根苗移栽试验方法 |
| 2.3.10 扦插试验方法 |
| 2.3.11 试验统计指标及数据分析 |
| 2.4 长春花无菌芽诱导增殖试验设计 |
| 2.4.1 长春花种子消毒灭菌试验设计 |
| 2.4.2 不同基本培养基对长春花无菌芽增殖的试验设计 |
| 2.4.3 不同生长素与6-BA组合对长春花无菌芽增殖的试验设计 |
| 2.4.4 不同浓度的NAA与6-BA组合对长春花无菌芽增殖的试验设计 |
| 2.4.5 不同浓度的6-BA与NAA组合对长春花无菌芽增殖的试验设计 |
| 2.4.6 不同浓度的KT与NAA组合对长春花无菌芽增殖的试验设计 |
| 2.4.7 不同浓度的TDZ与6-BA+NAA组合对长春花无菌芽增殖的试验设计 |
| 2.4.8 不同浓度的CPPU与6-BA+NAA组合对长春花无菌芽增殖的试验设计 |
| 2.5 长春花愈伤组织诱导与芽分化试验设计 |
| 2.5.1 单一激素对长春花愈伤组织诱导的试验设计 |
| 2.5.2 两种激素组合处理对长春花愈伤组织诱导的试验设计 |
| 2.5.3 不同取材部位对长春花愈伤组织诱导的试验设计 |
| 2.5.4 不同激素组合对长春花愈伤组织芽分化的试验设计 |
| 2.5.5 不同浓度KT处理对长春花愈伤组织芽分化的试验设计 |
| 2.5.6 愈伤组织诱导培养基对长春花愈伤组织芽分化的试验设计 |
| 2.5.7 取材部位对长春花愈伤组织芽分化的试验设计 |
| 2.6 长春花组培苗生根与移栽试验设计 |
| 2.6.1 不同基本培养基对长春花组培苗生根的试验设计 |
| 2.6.2 不同生长素种类对长春花组培苗生根的试验设计 |
| 2.6.3 不同浓度活性炭对长春花组培苗生根的试验设计 |
| 2.6.4 不同激素组合对长春花组培苗生根的试验设计 |
| 2.6.5 不同移栽基质对长春花组培生根苗移栽成活情况的试验设计 |
| 2.7 长春花扦插生根试验设计 |
| 2.7.1 不同激素处理对长春花扦插生根的试验设计 |
| 2.7.2 50mg/L ABT-6溶液不同浸泡时间对长春花扦插生根的试验设计 |
| 2.7.3 不同浓度NAA与ABT-6溶液组合对长春花扦插生根的试验设计 |
| 2.7.4 不同取穗部位对长春花扦插生根的试验设计 |
| 3 试验结果与分析 |
| 3.1 长春花无菌芽诱导增殖试验结果与分析 |
| 3.1.1 0.1%HgCl_2、10%NaClO不同灭菌时间对长春花种子的影响 |
| 3.1.2 不同基本培养基对长春花无菌芽增殖的影响 |
| 3.1.3 不同生长素种类与6-BA组合对长春花无菌芽增殖的影响 |
| 3.1.4 不同浓度的NAA与6-BA组合对长春花无菌芽增殖的影响 |
| 3.1.5 不同浓度的6-BA与NAA组合对长春花无菌芽增殖的影响 |
| 3.1.6 不同浓度的KT与NAA组合对长春花无菌芽增殖的影响 |
| 3.1.7 不同浓度的TDZ与6-BA+NAA组合对长春花无菌芽增殖的影响 |
| 3.1.8 不同浓度的CPPU与6-BA+NAA组合对长春花无菌芽增殖的影响 |
| 3.2 长春花愈伤组织诱导与芽分化试验结果与分析 |
| 3.2.1 单一激素对长春花愈伤组织诱导的影响 |
| 3.2.2 两种激素组合对长春花愈伤组织诱导的影响 |
| 3.2.3 不同取材部位对长春花愈伤组织诱导的影响 |
| 3.2.4 不同激素组合对长春花愈伤组织芽分化的影响 |
| 3.2.5 不同浓度KT处理对长春花愈伤组织芽分化的影响 |
| 3.2.6 愈伤组织诱导培养基对长春花愈伤组织芽分化的影响 |
| 3.2.7 取材部位对长春花愈伤组织芽分化的影响 |
| 3.3 长春花组培苗生根与移栽试验结果与分析 |
| 3.3.1 不同基本培养基对长春花组培苗生根的影响 |
| 3.3.2 不同生长素种类对长春花组培苗生根的影响 |
| 3.3.3 不同浓度活性炭对长春花组培苗生根的影响 |
| 3.3.4 不同激素组合对长春花组培苗生根的影响 |
| 3.3.5 不同基质对长春花组培生根苗移栽成活情况的影响 |
| 3.4 长春花扦插生根试验结果与分析 |
| 3.4.1 不同激素处理对长春花扦插生根的影响 |
| 3.4.2 50mg/L ABT-6溶液不同浸泡时间对长春花扦插生根的影响 |
| 3.4.3 不同浓度NAA与ABT-6溶液组合对长春花扦插生根的影响 |
| 3.4.4 不同取穗部位对长春花扦插生根的影响 |
| 4 讨论 |
| 4.1 长春花种子消毒灭菌及无菌芽诱导增殖的影响因子 |
| 4.1.1 NaClO适宜用于长春花种子消毒灭菌 |
| 4.1.2 基本培养基影响长春花无菌芽增殖效果 |
| 4.1.3 生长激素种类及浓度影响长春花无菌芽增殖效果 |
| 4.1.4 细胞分裂素种类及浓度影响长春花无菌芽增殖效果 |
| 4.1.5 TDZ和CPPU促进长春花无菌芽增殖 |
| 4.2 长春花愈伤组织诱导与芽分化的影响因子 |
| 4.2.1 激素种类影响长春花愈伤组织诱导效果 |
| 4.2.2 激素组合比单一激素处理更有利于长春花愈伤组织诱导 |
| 4.2.3 取材部位影响长春花愈伤组织诱导及芽分化 |
| 4.2.4 不同激素组合及浓度影响长春花愈伤组织芽分化 |
| 4.2.5 不同培养基诱导出的愈伤组织芽分化情况不同 |
| 4.3 长春花组培苗生根的影响因子 |
| 4.3.1 基本培养基影响长春花组培苗生根 |
| 4.3.2 生长素种类影响长春花组培苗生根 |
| 4.3.3 活性炭影响长春花组培苗生根 |
| 4.3.4 激素组合比单一激素处理更有利于长春花组培苗生根 |
| 4.3.5 基质成分影响长春花组培生根苗移栽成活率 |
| 4.4 长春花枝条扦插生根的影响因子 |
| 4.4.1 外源激素能有效促进长春花扦插生根 |
| 4.4.2 激素处理时间影响长春花扦插生根效果 |
| 4.4.3 ABT-6与NAA组合比单一激素处理更有利于长春花扦插生根 |
| 4.4.4 取穗枝条部位是影响长春花扦插生根的重要因子 |
| 5 结论 |
| 致谢 |
| 参考文献 |
| 附录A |
| 附录B(版图说明) |
（8）长春花毛状根再生植株的获得及抗癌生物碱的产生（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 方法 |
| 1.2.1 愈伤组织的诱导 |
| 1.2.2 不定芽的分化 |
| 1.2.3 不定根的诱导 |
| 1.2.4 炼苗移栽 |
| 1.2.5 长春花再生植株的PCR检测 |
| 1.2.6 再生植株叶片生物碱的测定 |
| 1.2.7 再生植株基因表达分析 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 愈伤组织的诱导 |
| 2.2 不定芽的分化 |
| 2.3 不定根的诱导 |
| 2.4 炼苗和移栽 |
| 2.5 长春花再生植株的PCR检测 |
| 2.6 再生植株叶片中生物碱的测定 |
| 2.7 再生植株目的基因表达 |
| 3 讨论 |
（9）小蔓长春花药用成分长春胺的分离精制工艺及其组织培养研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 目录 |
| 第一章 文献综述 |
| 1 小蔓长春花生物学特征 |
| 1.1 植物形态特征 |
| 1.2 生长习性 |
| 2 小蔓长春花的有效成分 |
| 3 长春胺药用价值 |
| 3.1 治疗缺血性心脑血管疾病 |
| 3.2 增强记忆力 |
| 3.3 治疗痴呆 |
| 3.4 改善视力 |
| 3.5 其它药用价值 |
| 4 长春胺药理学与药动学研究 |
| 4.1 药理学 |
| 4.2 药动学 |
| 5 小蔓长春花中长春胺提取方法 |
| 5.1 水醇法 |
| 5.2 亲脂性有机溶剂提取法 |
| 5.3 其他方法 |
| 6 小蔓长春花中长春胺纯化工艺 |
| 6.1 薄层色谱法 |
| 6.2 有机溶剂萃取 |
| 6.3 柱色谱 |
| 6.4 HPLC法 |
| 6.5 高速逆流色谱(HSCCC)法 |
| 7 长春胺测定方法 |
| 7.1 薄层色谱法(TLC) |
| 7.2 高效液相色谱法(HPLC) |
| 7.3 其他方法 |
| 8 小蔓长春花组织培养研究 |
| 9 本研究的目的、意义和内容 |
| 9.1 研究目的与意义 |
| 9.2 主要研究内容 |
| 第二章 HPLC测定小蔓长春花中长春胺方法的优化 |
| 1 材料、试剂与仪器 |
| 1.1 实验材料 |
| 1.2 主要试剂 |
| 1.3 主要仪器 |
| 2 实验方法 |
| 2.1 标准溶液制备 |
| 2.2 供试样品制备 |
| 2.3 紫外分析 |
| 2.4 流动相体系优选 |
| 2.5 线性关系考察 |
| 2.6 方法学考察 |
| 3 结果与分析 |
| 3.1 长春胺紫外光谱扫描结果 |
| 3.2 流动相体系优选结果 |
| 3.3 线性关系 |
| 3.4 方法学考察结果 |
| 4 本章结论 |
| 5 本章讨论 |
| 第三章 小蔓长春花中长春胺提取工艺研究及含量测定 |
| 1 材料、试剂与仪器 |
| 1.1 实验材料 |
| 1.2 主要试剂 |
| 1.3 主要仪器 |
| 2 实验方法 |
| 2.1 标准溶液制备 |
| 2.2 色谱条件 |
| 2.3 优选提取条件 |
| 2.3.1 冷浸法 |
| 2.3.2 超声法 |
| 2.3.3 索氏提取 |
| 2.4 待测样品制备 |
| 3 结果与分析 |
| 3.1 提取条件优选结果 |
| 3.2 样品中长春胺含量测定结果 |
| 4 本章结论 |
| 5 本章讨论 |
| 第四章 小蔓长春花中长春胺纯化工艺研究 |
| 1 仪器、材料与试剂 |
| 1.1 实验材料 |
| 1.2 主要试剂 |
| 1.3 主要仪器 |
| 2 实验方法 |
| 2.1 AB-8大孔树脂纯化长春胺 |
| 2.1.1 AB-8大孔树脂的预处理 |
| 2.1.2 上柱液制备 |
| 2.1.3 AB-8大孔树脂吸附柱的制备 |
| 2.1.4 洗脱条件考察 |
| 2.1.5 高效液相色谱检测洗脱液 |
| 2.1.6 验证试验 |
| 2.2 高速逆流色谱纯化长春胺 |
| 2.2.1 长春胺粗品制备 |
| 2.2.2 两相溶剂的选择 |
| 2.2.3 高速逆流色谱条件 |
| 2.2.4 高效液相色谱分析 |
| 3 结果与分析 |
| 3.1 洗脱条件 |
| 3.2 验证实验结果 |
| 3.3 两项溶剂的选择 |
| 3.4 高速逆流色谱分离长春胺 |
| 3.5 高效液相色谱鉴定产物纯度 |
| 4 本章结论 |
| 5 本章讨论 |
| 第五章 小蔓长春花组织培养及长春胺含量的测定 |
| 1 材料、试剂与仪器 |
| 1.1 实验材料 |
| 1.2 主要试剂 |
| 1.3 主要仪器 |
| 2 实验方法 |
| 2.1 无菌体系建立 |
| 2.2 诱导愈伤外植体制备 |
| 2.3 培养基 |
| 2.4 愈伤组织继代培养 |
| 2.5 培养条件 |
| 2.6 无菌苗及愈伤组织中长春胺含量测定 |
| 2.6.1 色谱条件 |
| 2.6.2 标准品贮备液制备 |
| 2.6.3 供试品溶液制备 |
| 2.7 数据处理 |
| 3 结果与分析 |
| 3.1 无菌体系的建立 |
| 3.2 激素对愈伤组织诱导的影响 |
| 3.3 愈伤组织继代培养 |
| 3.4 不同材料中长春胺的含量 |
| 3.4.1 无菌植株中长春胺含量 |
| 3.4.2 诱导培养愈伤中长春胺含量 |
| 3.4.3 继代培养愈伤中长春胺含量 |
| 4 本章结论 |
| 5 本章讨论 |
| 结论 |
| 参考文献 |
| 攻读硕士学位期间取得的科研成果 |
| 致谢 |
（10）珍稀药材小蔓长春花组织培养及长春胺含量的测定（论文提纲范文）
| 1 材料 |
| 1.1 小蔓长春花 |
| 1.2 试剂 |
| 1.3 仪器 |
| 2 方法 |
| 2.1 无菌体系建立 |
| 2.2 愈伤诱导培养基 |
| 2.3 愈伤组织继代培养 |
| 2.4 培养条件 |
| 2.5 长春胺含量测定 |
| 2.5.1 色谱条件 |
| 2.5.2 对照品溶液制备 |
| 2.5.3 供试品制备 |
| 2.5.4 线性关系考察 |
| 2.5.5 方法学考察 |
| 3 结果与分析 |
| 3.1 无菌体系的建立 |
| 3.2 激素对愈伤组织诱导的影响 |
| 3.3 愈伤组织继代培养 |
| 3.4 线性关系 |
| 3.5 方法学考察 |
| 3.6 无菌植株中长春胺含量 |
| 3.7 愈伤组织中长春胺含量 |
| 3.8 继代培养愈伤中长春胺含量 |
| 4 讨论 |
四、长春花愈伤组织诱导（论文参考文献）
- [1]长春花愈伤组织诱导研究[J]. 贾鸿儒,任俞新,牛晓钰. 甘肃农业科技, 2020(10)
- [2]长春花不同细胞培养物中一氧乙酰化地马地宁的水解过程[J]. 杨静怡,王燕燕,于放. 大连工业大学学报, 2020(02)
- [3]长春花愈伤组织诱导及长春质碱的提取研究[J]. 李一文,高明波,禹潇倩,王闻笛,韦胜,李政. 广州化工, 2019(16)
- [4]柑橘黄龙病寄主长春花愈伤组织的诱导与增殖[J]. 宋晓兵,彭埃天,陈霞,凌金锋,张炼辉. 生物学杂志, 2016(05)
- [5]均匀设计实验对长春花愈伤组织诱导条件的优化[J]. 侯小龙,郑亚菲,伍春莲. 西华师范大学学报(自然科学版), 2015(03)
- [6]长春花组织培养与扦插繁殖技术研究[D]. 刘洁云. 广西大学, 2013(03)
- [7]长春花组织培养研究进展[J]. 曾智发,柳润辉. 药学实践杂志, 2012(04)
- [8]长春花毛状根再生植株的获得及抗癌生物碱的产生[J]. 龚一富,王何瑜,卢鹏,袁泉,王桂林,刘建军. 中草药, 2012(04)
- [9]小蔓长春花药用成分长春胺的分离精制工艺及其组织培养研究[D]. 侯恩太. 西北大学, 2011(08)
- [10]珍稀药材小蔓长春花组织培养及长春胺含量的测定[J]. 侯恩太,王英娟,李多伟,李娜,陈洪栋,步怀宇. 中国中药杂志, 2011(07)