一、蜂胶对诱变剂诱发基因突变的抑制作用(论文文献综述)
郑宇斐[1](2020)在《中国蜂胶及其黄酮类单体抗黑素瘤作用及其机制》文中研究说明黑素瘤是一种发展极为迅速的恶性皮肤病,具有发展迅速、恶性程度高、预后差、致死率高等特点。早期黑素瘤患者的5年存活率高达92%,但是黑素瘤一旦开始转移,患者的5年存活率迅速下降至15%。目前虽然关于黑素瘤研究已经有了一定的进展,然而针对黑素瘤的主要治疗方法效果并不显着,并且受到严重的副作用和黑素瘤耐药性的困扰。因此,对黑素瘤相关治疗药物和手段的研究仍是目前癌症研究的一个重点和热点。蜂胶是蜜蜂采集植物芽孢及伤口胶质物混合自身上颚腺分泌物而成的一种蜂产品,具有多种生物学活性,包括抗菌、抗氧化、抗炎、抗肿瘤等作用。在抗肿瘤方面,有文献指出中国蜂胶可以有效地诱导包括乳腺癌、结肠癌在内的多种肿瘤发生细胞凋亡和周期阻滞,也是近几年蜂胶药理学研究的热点之一。基于蜂胶的前期抗肿瘤研究,本研究利用细胞模型和小鼠模型,系统性地探究了中国蜂胶及其黄酮类单体(松属素和柯因)对黑素瘤增殖、转移、自噬等方面的影响及其相关机制,以期揭示中国蜂胶的抗黑素瘤作用,为蜂胶的应用提供理论基础,也为黑素瘤的治疗提供新的思路。主要研究结果如下:1中国蜂胶对黑素瘤的发展影响研究我们首次证明了中国蜂胶对黑素瘤细胞系A375的促凋亡作用和抑制转移作用并揭示其分子机制。在经中国蜂胶处理后,A375细胞发生内源性凋亡和细胞周期阻滞。在此基础上,我们发现中国蜂胶在黑素瘤细胞中也能发挥其出色的抗炎作用,caspase-1和caspase-4表达水平降低,同时伴随着IL-1α、IL-1β和IL-18 mRNA水平的下降,进一步证明了中国蜂胶对黑素瘤炎性微环境的保持有抑制作用。我们还发现中国蜂胶可以在A375细胞中激活自噬,而抑制自噬会减弱中国蜂胶对黑素瘤的促凋亡作用,这也说明了自噬的发生增强了中国蜂胶对黑素瘤的细胞毒作用。此外,我们的实验结果证明中国蜂胶能减弱黑素瘤在体外的迁移能力。2中国蜂胶抗黑素瘤单体活性成分筛选利用高效液相色谱,我们确定了本实验中使用的中国蜂胶的主要功能性成分,包括咖啡酸、p—香豆酸、阿魏酸、异阿魏酸、肉桂酸、山奈酚、杨梅桐、槲皮素、3,4-二甲氧基肉桂酸、芹菜素、短叶松素、柯因、松属素、高良姜素、咖啡酸苯乙酯和3-O-乙酰基短叶松素等。利用CCK-8实验,我们比较这其中高含量的功能性单体对黑素瘤细胞的细胞毒性,结果显示松属素、咖啡酸苯乙酯、柯因、短叶松素、芹菜素、咖啡酸二甲醚对黑素瘤的细胞活性都有一定的抑制作用。3中国蜂胶活性成分松属素抗黑素瘤作用研究利用体内外模型进一步检测并探究了松属素对黑素瘤的抗肿瘤作用及其相关机制。在细胞实验中,我们发现松属素能诱导黑素瘤细胞(B16F10和A375)发生凋亡,并呈现浓度相关性。对凋亡调控通路的研究显示,松属素通过激活IRE1α/Xbp1通路引发内质网应激,从而活化下游蛋白caspase-12(鼠源细胞)/caspase-4(人源细胞)介导黑素瘤细胞凋亡。此外,我们的结果还显示松属素通过激活PI3K/Akt/mTOR通路抑制黑素瘤细胞中自噬的发生,增强了松属素对黑素瘤的促凋亡作用。在小鼠成瘤模型中,松属素显着抑制了黑素瘤在小鼠体内的生长,并且在肿瘤组织中我们检测到了高水平的凋亡信号。4中国蜂胶活性成分柯因抑制黑素瘤转移效果研究我们证明了柯因可以有效抑制黑素瘤转移。通过细胞实验我们发现,在低浓度时,柯因也表现出了对黑素瘤细胞转移、侵袭和促血管生成能力很好的抑制作用。同时,柯因抑制了黑素瘤细胞的失巢凋亡抵抗,增加了其在转移过程中的凋亡率。进一步实验表明柯因通过下调FOXM1/β-catenin通路逆转了黑素瘤细胞上皮细胞间充质转化过程,而过表达FOXM1则会减弱柯因的抗黑素瘤转移作用。我们同时也在小鼠模型上验证了细胞实验的发现。利用肺转移模型,我们证明柯因处理能明显降低小鼠肺转移肿瘤的出现几率,同时在肺部肿瘤组织中,柯因治疗组FOXM1的表达量也更低。综上所述,本论文系统地研究了中国蜂胶的抗黑素瘤作用及其相关机制,有助于中国蜂胶的进一步开发与利用;通过研究中国蜂胶中主要功能活性单体的抗黑素瘤作用及其相关机制,揭示了中国蜂胶抗黑素瘤的物质成分基础,也为黑素瘤治疗药物开发提供了参考。
郑宇斐,王凯,胡福良[2](2016)在《蜂胶抗肿瘤活性及其机制的研究进展》文中研究指明蜂胶是蜜蜂采集植物树脂等分泌物与其上颚腺、蜡腺等分泌物混合形成的胶粘性物质,化学成分复杂,生物学活性广泛。本文对不同地理来源蜂胶的抗肿瘤活性、蜂胶中黄酮类、萜烯类、酚酸类单体成分的抗肿瘤活性,以及蜂胶及其有效活性成分在诱导细胞凋亡、抑制肿瘤细胞增殖、抗血管增生、抑制信号转导通路的活化、抗肿瘤转移、对致癌因素的防治等抗肿瘤作用机制方面的研究进展进行综述,以期为蜂胶抗肿瘤活性的进一步研究以及在抗肿瘤药物中的开发利用提供参考。
赵殊艺[3](2013)在《蜂胶与热疗结合对舌鳞癌细胞Tca8113影响的体外实验研究》文中认为[目的]本研究以云南蜂胶醇提物体在水浴热疗43℃协同作用下或者分别体外作用于人舌鳞癌细胞Tca8113,研究蜂胶对细胞增殖作用的影响和细胞凋亡率,并初步探讨蜂胶促进人舌鳞癌细胞凋亡的可能机制,以期对蜂胶抗舌癌作用提供实验依据。[方法]采用含有浓度为25μg/ml、50μg/ml、100μg/ml、200gg/ml、400μg/ml5种浓度的蜂胶醇提物的培养基在和/或43℃水浴环境下加热80min,分为单纯蜂胶组,单纯热疗组,蜂胶和热疗同时干预培养人舌鳞癌细胞组,通过MTT法检测蜂胶对人舌鳞癌细胞增殖作用的影响;流式细胞术检测细胞凋亡率;Western blot法检测人舌鳞癌细胞凋亡相关蛋白Bcl-2,Bak,Caspase-3在处理细胞后的表达变化。[结果]体外实验研究结果显示,蜂胶对人舌鳞癌细胞的生长具有明显的抑制作用,总体上其抑制作用具有时间和浓度依赖性;且热疗对蜂胶具有增敏作用;流式细胞术检测凋亡研究结果显示,舌癌细胞在蜂胶和热疗作用下均产生了凋亡,且凋亡有时间性,总体上同时作用凋亡率最高;对细胞凋亡相关蛋白的研究结果显示,处理前后细胞凋亡相关蛋白表达有显着变化,处理后凋亡相关蛋白Bcl-2表达减弱,Bak,Caspase-3则表达增强。[结论]蜂胶联合热疗,单纯蜂胶处理细胞和单纯热疗处理细胞均在体外能有效地抑制人舌鳞癌细胞的增殖;蜂胶联合热疗,单纯蜂胶处理细胞和单纯热疗处理细胞均诱导人舌鳞癌细胞凋亡作用,且其凋亡作用可能与下调Bcl-2,上调Bak、Caspase-3等调亡相关蛋白表达有关。
甘甜[4](2012)在《云南蜂胶对舌癌细胞影响的体外实验研究》文中研究表明[目的]本研究以云南蜂胶醇提物体外作用于人舌鳞癌细胞,研究蜂胶对细胞超微结构及细胞增殖力的影响,初步探讨蜂胶促进人舌鳞癌细胞凋亡的可能机制,以期对蜂胶抗舌癌作用提供实验依据。[方法]采用含有浓度为25ug/ml、50ug/ml、100ug/ml、200ug/ml、400ug/ml蜂胶醇提物的培养基干预培养人舌鳞癌细胞和正常人口腔粘膜成纤维细胞,通过MTT法检测蜂胶对人舌鳞癌细胞和正常人口腔粘膜成纤维细胞的影响;采用倒置显微镜和透射电子显微镜观察不同浓度的蜂胶对人舌鳞癌细胞作用不同时间点细胞数量、形态和结构的变化;免疫组化P-V两步法检测人舌鳞癌细胞凋亡相关蛋白Bcl-2, Bax, Caspase-3在用药前后的表达变化。[结果]体外实验研究结果显示,蜂胶对人舌鳞癌细胞的生长具有明显的抑制作用,总体上其抑制作用具有时间和浓度依赖性;蜂胶对正常人口腔黏膜成纤维细胞有一定的抑制作用,同样具有时间和浓度依赖性,但相同时间、相同浓度的蜂胶对两种细胞的作用存在显着性差异(p<0.01);倒置显微镜观察到随蜂胶浓度的升高,作用时间的延长,舌癌细胞贴壁率越低,细胞形态改变越明显;透射电镜观察舌鳞癌细胞凋亡的形态改变,胞浆内出现空泡,线粒体肿大变圆,细胞微绒毛脱失,细胞核皱缩、破碎,染色质斑块状边缘聚集,线粒体嵴溶解形成多泡体及凋亡小体;对细胞凋亡相关蛋白的研究结果显示,用药前后细胞凋亡相关蛋白表达有显着变化,用药后凋亡相关蛋白Bc1-2表达减弱,Bax, Caspase-3则表达增强。[结论]蜂胶在体外能有效地抑制人舌鳞癌细胞的增殖;蜂胶对人舌鳞癌细胞具有细胞毒性,可致人舌鳞癌细胞细胞核固缩、碎裂,核染色质斑块状聚集,线粒体肿大变圆及形成凋亡小体;蜂胶诱导人舌鳞癌细胞凋亡,可能与下调Bc1-2,上调Bax、 Caspase-3等凋亡相关蛋白表达有关。
李园,丁仲鹃[5](2011)在《蜂胶生物效应的细胞学机制》文中指出背景:蜂胶是一种天然活性物质,具有抗肿瘤,抗氧化,抗炎,免疫调节,治疗糖尿病以及保肝护肝的作用,其对细胞的作用机制是目前研究的热点之一。目的:从细胞水平综合分析蜂胶对细胞的药理作用机制。方法:计算机检索中国期刊全文数据以及PubMed数据库1977/2010相关文章,检索词为"蜂胶,抗肿瘤,抗氧化,抗炎,免疫调节,糖尿病,肝,propolis,antitumor,antioxidant,antiinflammatory,immunoregulation,diabetes mellitus,hepatocyte"。纳入与蜂胶对细胞作用机制有关的文献。排除与研究目的无关和内容重复者。结果与结论:共纳入47篇文献,总结了蜂胶对多种细胞可能的作用机制。蜂胶作为高效纯天然药物具有广泛的药理作用,可抗氧化、消除自由基、调节炎症因子等途径作用于细胞,对细胞起保护和修复作用、调节细胞活性、影响细胞因子的分泌。
程浩[6](2010)在《蜂胶软胶囊增强免疫功能和毒理性研究》文中指出蜂胶是蜜蜂从外界的胶源植物的嫩芽或树皮伤口上采集的树脂,并混入蜜蜂上颚腺物和蜂蜡而成的一种棕红色、棕黄色、棕褐色或带有青绿色的粘性固体。蜂胶有较高的营养价值和保健作用,很受消费者青睐。近年来,对蜂胶的有效成分和生物学功能的研究取得了很大的进展,人们已从蜂胶中分离鉴定出数百种活性成分。蜂胶作为一种多功能物质,已被开发成多种保健食品。蜂胶软胶囊的开发为蜂胶在功能性食品中应用奠定了一定的基础。因此,本研究对蜂胶软胶囊的增强免疫功能和毒理学性质进行了研究。在用不同剂量的蜂胶软胶囊灌胃小鼠30d发现,蜂胶软胶囊对试验前后小鼠体重和脏器/体重比值均无显着影响。在二硝基氟苯(DNFB)诱导的小鼠迟发性变态反应(DTH)和ConA诱导的小鼠脾淋巴细胞转化试验(MTT法)的细胞免疫功能试验中发现,中剂量的蜂胶软胶囊能够增强DNFB引起的小鼠迟发性变态反应作用,而高剂量的蜂胶软胶囊能够增强淋巴细胞增殖能力,说明蜂胶软胶囊可增强小鼠细胞免疫功能。在体液免疫功能试验中,三个剂量的蜂胶软胶囊对小鼠产生血清溶血素的能力均无显着性影响,但中、高剂量的蜂胶软胶囊能够显着增强小鼠产生抗体生成细胞的能力。单核-巨噬细胞功能试验中,三个剂量的蜂胶软胶囊对小鼠碳廓清能力无显着影响,但高剂量的蜂胶软胶囊能够显着增强小鼠腹腔巨噬细胞的吞噬能力(P<0.05)。中、高剂量的蜂胶软胶囊能显着增强小鼠NK细胞活性的作用。上述试验结果表明,蜂胶软胶囊具有增强免疫力的功能。采用急性毒性试验、遗传毒性试验(Ames试验、小鼠骨髓微核试验、小鼠精子畸形试验)和30d喂养试验等对蜂胶软胶囊的食用安全性进行毒理学试验评价,结果发现蜂胶软胶囊对雌雄小鼠体重并无显着影响;而且Ames试验、小鼠骨髓微核试验、小鼠精子畸形试验三项遗传毒性试验结果均为阴性;30d喂养试验未见试验大鼠的生长发育、血液学、生化、脏体比及组织病理学有异常变化。因此,蜂胶软胶囊急性毒性分级属无毒级、无遗传毒性。
刘忠平,庞惠民,赵云霄,朱玉琢[7](2008)在《中草药的抗诱变作用研究进展》文中认为随着工业的高速发展,环境中各种诱变剂不断增加,诱变剂对人们的危害不容忽视。中草药中含有多种生物活性成分,具有良好的抗诱变作用,近年来对中草药抗诱变的研究日渐深入,前景十分广阔,本文对近年来中草药抗诱变研究进展加以综述。
冯建新[8](2007)在《蜂胶的抗肿瘤作用》文中指出蜂胶具有抗菌消炎、抗病毒、抗氧化、抗肿瘤、增强免疫、软化血管、净化血液、调节血脂、调节血糖等广泛的生物学作用。1996年蜂胶研究课题列入"九五"国家重点科技攻关项目。2002年卫生部正式将蜂胶列入保健食品原料名单。2005年蜂胶列入《中华人民共和国药典》。本文主要对蜂胶的抗肿瘤作用进行一些介绍。
刘忠平[9](2007)在《白头翁水提物的抗诱变作用》文中进行了进一步梳理为了观察白头翁水提物(PWE)的抗诱变作用,并进一步对中草药的抗诱变机制进行探讨,本研究以环磷酰胺(CP)为诱变剂,对小鼠淋巴细胞增殖、骨髓嗜多染红细胞(PCE)微核(MN)率、血清超氧化物岐化酶(SOD)活性、血清总抗氧化能力(T-AOC)、自然杀伤细胞(NK细胞)活性等系列指标进行了检测。结果发现PWE对机体的免疫系统具有正向调节作用,能显着促进T、B淋巴细胞增殖、降低微核率、提高血清超氧化物歧化酶活性、增强总抗氧化能力,提高自然杀伤细胞活性并明显对抗CP对机体造成的免疫抑制和遗传损伤。本文研究表明,PWE具有抗诱变作用,可能通过以下机制发挥其抗诱变作用:抑制诱变剂的诱变作用,减少诱变剂对DNA的损伤作用;提高机体对外源性诱变剂的免疫力,使染色体免受诱变剂的影响;抗氧化和消除自由基损伤,从而增强机体的总抗氧化能力;增强自然杀伤细胞活性,释放多种细胞因子,参与机体的免疫调节,提高机体的防御能力。
张翠平[10](2005)在《蜂胶抗癌作用研究进展》文中进行了进一步梳理蜂胶是一种具有多种药理作用的重要的蜂产品。本文在国内外相关研究的基础上,对蜂胶抗癌机理、蜂胶对肿瘤抑制和杀死的作用等研究进展综合论述,并提出蜂胶抗癌作用研究中存在的问题。
二、蜂胶对诱变剂诱发基因突变的抑制作用(论文开题报告)
(1)论文研究背景及目的
此处内容要求:
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景,再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题,并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例:
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
(2)本文研究方法
调查法:该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法:用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法:通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法:通过调查文献来获得资料,从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法:依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法:对研究对象进行“质”的方面的研究,这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法:通过具体的数字,使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法:运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法:这是社会科学用来分析社会现象的一种方法,从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法:通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
三、蜂胶对诱变剂诱发基因突变的抑制作用(论文提纲范文)
(1)中国蜂胶及其黄酮类单体抗黑素瘤作用及其机制(论文提纲范文)
缩略词Abbreviations |
摘要 |
Abstract |
文献综述部分 |
第一章 黑素瘤治疗研究进展 |
1 黑素瘤发生诱发因素及其分子机制 |
2 黑素瘤治疗方法 |
2.1 化学药物治疗 |
2.2 免疫治疗 |
2.3 靶向治疗 |
2.4 黑素瘤的耐药机制 |
3 小结 |
参考文献 |
第二章 蜂胶及其单体抗肿瘤活性及其机制研究进展 |
1 蜂胶的抗肿瘤活性 |
2 蜂胶中活性单体成分的抗肿瘤活性 |
2.1 黄酮类化合物 |
2.2 萜烯类化合物 |
2.3 酚酸类化合物 |
3 蜂胶及其有效活性成分的抗肿瘤机制 |
3.1 诱导细胞凋亡 |
3.2 抑制肿瘤细胞增殖 |
3.3 抗血管增生 |
3.4 抗肿瘤转移 |
3.5 对致癌因素的防治 |
4 小结 |
参考文献 |
第三章 研究目的及主要内容 |
1 研究目的与意义 |
2 研究思路和主要内容 |
2.1 中国蜂胶的抗黑素瘤活性研究 |
2.2 中国蜂胶中抗黑素瘤活性单体筛选研究 |
2.3 松属素对黑素瘤的促凋亡作用及其机制研究 |
2.4 柯因对黑素瘤的抗转移作用及其机制研究 |
3 技术路线 |
实验研究部分 |
第四章 中国蜂胶对黑素瘤的促凋亡影响研究 |
1.引言 |
2.实验材料与方法 |
2.1 试剂 |
2.2 细胞培养 |
2.3 蜂胶样品收集和提取 |
2.4 细胞活力检测 |
2.5 细胞凋亡检测 |
2.6 细胞周期检测 |
2.7 总蛋白提取 |
2.8 蛋白印迹分析 |
2.9 基因表达丰度检测 |
2.10 细胞划痕实验 |
2.11 数据分析 |
3.结果与分析 |
3.1 中国蜂胶诱导线粒体主导的人黑素瘤细胞A375内源性死亡 |
3.2 中国蜂胶诱导人黑素瘤细胞A375 S-G2/M期细胞周期阻滞 |
3.3 中国蜂胶通过抑制NLRP-1相关炎性通路诱导A375细胞凋亡发生 |
3.4 中国蜂胶引发自噬从而增强其对人黑素瘤的细胞活性 |
4.讨论 |
5.小结 |
参考文献 |
第五章 中国蜂胶抗黑素瘤单体活性成分筛选 |
1 引言 |
2 实验材料与方法 |
2.1 液相色谱法-质谱联用(LC-MS)分析 |
2.2 实验试剂与成分 |
2.3 细胞活力检测 |
3 结果 |
3.1 中国蜂胶成分分析 |
3.2 中国蜂胶抗黑素瘤单体成分筛选 |
4 讨论 |
5 小结 |
参考文献 |
第六章 中国蜂胶活性成分松属素抗黑素瘤作用研究 |
1 引言 |
2 实验材料与方法 |
2.1 试剂 |
2.2 细胞培养 |
2.3 细胞活性试验 |
2.4 细胞凋亡率检测 |
2.5 TUNEL试验 |
2.6 蛋白免疫印迹 |
2.7 细胞自噬检测 |
2.8 动物实验 |
2.9 数据处理 |
3 实验结果 |
3.1 松属素诱导黑素瘤细胞凋亡 |
3.2 松属素诱导凋亡caspase级联反应与线粒体无关 |
3.3 松属素通过IRE1/Xbp1/CHOP通路诱导内质网应激介导的凋亡 |
3.4 松属素通过激活PI3K/Akt/mTOR通路抑制黑素瘤细胞中自噬发生 |
3.5 松属素在动物模型中抑制黑素瘤的生长 |
4 讨论 |
5 小结 |
参考文献 |
第七章 柯因抑制黑素瘤转移效果研究 |
1 引言 |
2 试剂与方法 |
2.1 细胞培养 |
2.2 蛋白质印迹实验 |
2.3 实时荧光定量PCR |
2.4 免疫荧光染色 |
2.5 C57BL/6小鼠肺转移模型 |
2.6 FOXM1过表达实验 |
2.7 细胞划痕实验 |
2.8 Transwell迁移实验 |
2.9 体外血管生成实验 |
2.10 体外细胞失巢死亡实验 |
2.11 数据处理 |
3 实验结果 |
3.1 柯因在体内外抑制黑素瘤细胞转移 |
3.2 柯因调控黑素瘤细胞上皮间充质转化过程和细胞基质降解 |
3.3 柯因减弱黑素瘤失巢凋亡抵抗和血管生成能力 |
3.4 柯因通过针对FOXM1调节黑素瘤细胞中β-catenin通路 |
3.5 过表达FOXM1减弱柯因对A375细胞转移的抑制作用 |
3.6 柯因通过干扰Pin1-FOXM1信号转导促进FOXM1降解 |
4 讨论 |
5 小结 |
参考文献 |
第八章 总结与展望 |
1.研究总结 |
2.创新点 |
3.研究展望 |
攻读博士学位期间发表的论文 |
致谢 |
(2)蜂胶抗肿瘤活性及其机制的研究进展(论文提纲范文)
1 不同地理来源蜂胶的抗肿瘤活性 |
2 蜂胶中活性单体成分的抗肿瘤活性 |
2.1 黄酮类化合物 |
2.1.1 柯因 |
2.1.2 槲皮素 |
2.1.3 高良姜素 |
2.2 萜烯类化合物 |
2.3 酚酸类化合物 |
2.3.1 咖啡酸苯乙酯 |
2.3.2 阿替匹林C |
3 蜂胶及其有效活性成分的抗肿瘤机制 |
3.1 诱导细胞凋亡 |
3.2 抑制肿瘤细胞增殖 |
3.3 抗血管增生 |
3.4 抑制信号转导通路的活化 |
3.4.1 NF-κB信号通路 |
3.4.2 Wnt信号通路 |
3.5 抗肿瘤转移 |
3.6 对致癌因素的防治 |
4 结语 |
(3)蜂胶与热疗结合对舌鳞癌细胞Tca8113影响的体外实验研究(论文提纲范文)
中英文缩略词表 |
摘要 |
Abstract |
引言 |
材料与方法 |
结果 |
讨论 |
结论 |
参考文献 |
综述 |
参考文献 |
攻读学位期间发表文章情况 |
致谢 |
(4)云南蜂胶对舌癌细胞影响的体外实验研究(论文提纲范文)
中英文略缩词表 |
中文摘要 |
英文摘要 |
引言 |
材料和方法 |
结果 |
讨论 |
结论 |
参考文献 |
文献综述 |
参考文献 |
攻读学位期间发表文章情况 |
致谢 |
(5)蜂胶生物效应的细胞学机制(论文提纲范文)
0 引言 |
1 资料和方法 |
1.1 资料来源 |
1.2 纳入及排除标准 |
1.3 质量评估 |
1.4 数据的提取 |
2 结果 |
2.1 蜂胶对肿瘤细胞的作用 |
2.2蜂胶清除自由基对细胞膜及细胞器的损伤 |
2.3 蜂胶对炎性细胞的作用 |
2.4 蜂胶对免疫系统细胞的作用 |
2.5 蜂胶具有修复胰岛细胞 |
2.6 蜂胶对肝细胞的保护作用 |
3 小结 |
(6)蜂胶软胶囊增强免疫功能和毒理性研究(论文提纲范文)
摘要 |
ABSTRACT |
第一章 文献综述 |
1.1 蜂胶的物理性质 |
1.2 蜂胶的化学成分 |
1.2.1 黄酮类化合物 |
1.2.2 香气挥发性成分 |
1.2.3 有机酸类 |
1.2.4 醇类化合物 |
1.2.5 蛋白质 |
1.2.6 其它成分 |
1.3 蜂胶的生理活性及其功能 |
1.3.1 抗菌、抗病毒作用 |
1.3.2 抗肿瘤、抗癌作用 |
1.3.3 抗氧化清除自由基 |
1.3.4 降血压、血糖、血脂 |
1.3.5 促进组织修复作用 |
1.3.6 保肝作用 |
1.3.7 促进免疫调节 |
1.4 蜂胶的应用 |
1.4.1 使用渊源 |
1.4.2 现代应用 |
1.5 本课题的主要内容及意义 |
第二章 蜂胶软胶囊的增强免疫功能研究 |
2.1 材料和方法 |
2.1.1 样品 |
2.1.2 试验动物 |
2.1.3 剂量设计 |
2.1.4 主要仪器与试剂 |
2.1.5 试验方法 |
2.1.6 试验数据统计 |
2.2 结果与讨论 |
2.2.1 样品对试验前后动物体重的影响 |
2.2.2 样品对脏器/体重比值的影响 |
2.2.3 迟发性变态反应 |
2.2.4 细胞转化试验 |
2.2.5 抗体生成细胞检测 |
2.2.6 血清溶血素试验 |
2.2.7 小鼠碳廓清试验 |
2.2.8 巨噬细胞吞噬能力试验 |
2.2.9 NK细胞活性检测 |
2.3 小结 |
第三章 蜂胶软胶囊毒理性安全评价 |
3.1 材料与方法 |
3.1.1 样品 |
3.1.2 试验动物 |
3.1.3 主要仪器与试剂 |
3.1.4 试验方法 |
3.1.5 试验数据统计 |
3.2 结果与讨论 |
3.2.1 样品对小鼠体重的影响 |
3.2.2 样品急性毒性观察情况 |
3.2.3 样品对小鼠骨髓嗜多染红细胞微核影响 |
3.2.4 样品对小鼠睾丸初级精母细胞染色体畸变影响 |
3.2.5 30天喂养试验 |
3.3 小结 |
全文结论 |
参考文献 |
致谢 |
(7)中草药的抗诱变作用研究进展(论文提纲范文)
1 单味中草药抗诱变 |
2 中草药多糖抗诱变 |
3 中草药复方及中草药合剂抗诱变 |
4 可食性中草药抗诱变 |
(9)白头翁水提物的抗诱变作用(论文提纲范文)
内容提要 |
英文缩写词表 |
引言 |
一、环境中各种诱变剂不断增加,对人类健康的威胁日益严重 |
二、从自然环境中寻找抗诱变剂,中草药前景广阔 |
三、中草药抗诱变作用机制的研究概况 |
四、白头翁水提物的抗诱变研究 |
五、中草药抗诱变研究领域目前现状与前景 |
材料与方法 |
一、主要试剂 |
二、主要仪器 |
三、实验材料 |
(一) 实验动物 |
(二) 细胞株 |
(三) 白头翁水提物(PWE) |
四、实验方法 |
(一) PWE 最佳实验剂量的确定 |
(二) T 淋巴细胞转化实验 |
(三) 小鼠骨髓嗜多染红细胞微核实验 |
(四) B 淋巴细胞增殖实验 |
(五) NK 细胞活性测定 |
(六) 血清SOD活性测定 |
(七) 血清T-AOC测定 |
五、统计方法 |
实验结果 |
一、PWE 最佳实验剂量的确定 |
二、PWE对小鼠T淋巴细胞增殖的影响 |
三、PWE 对小鼠骨髓嗜多染红细胞微核率的影响 |
四、PWE对小鼠B淋巴细胞增殖的影响 |
五、PWE对小鼠NK细胞活性的影响 |
六、PWE对小鼠血清SOD活性的影响 |
七、PWE对小鼠血清T-AOC的影响 |
讨论 |
一、PWE 最佳实验剂量的确定 |
二、PWE 对小鼠淋巴细胞增殖的影响 |
三、PWE 对小鼠骨髓嗜多染红细胞微核率的影响 |
四、PWE对小鼠NK细胞活性的影响 |
五、PWE对小鼠血清SOD活性和T-AOC的影响 |
小结 |
结论 |
参考文献 |
中文摘要 |
英文摘要 |
致谢 |
(10)蜂胶抗癌作用研究进展(论文提纲范文)
1 蜂胶的化学预防作用 |
1.1 蜂胶抗诱变作用 |
1.2 蜂胶对致癌物入侵的阻止作用 |
2 蜂胶对肿瘤抑制和杀死的作用 |
2.1 蜂胶对肿瘤细胞转化、杀死作用 |
2.2 蜂胶对肿瘤细胞的毒性作用 |
2.3 蜂胶对机体免疫调节作用 |
2.4 蜂胶在基因调控方面的作用 |
3 蜂胶对抗癌药的增效解毒作用 |
4 蜂胶抗癌作用研究存在的问题 |
四、蜂胶对诱变剂诱发基因突变的抑制作用(论文参考文献)
- [1]中国蜂胶及其黄酮类单体抗黑素瘤作用及其机制[D]. 郑宇斐. 浙江大学, 2020
- [2]蜂胶抗肿瘤活性及其机制的研究进展[J]. 郑宇斐,王凯,胡福良. 天然产物研究与开发, 2016(04)
- [3]蜂胶与热疗结合对舌鳞癌细胞Tca8113影响的体外实验研究[D]. 赵殊艺. 昆明医科大学, 2013(02)
- [4]云南蜂胶对舌癌细胞影响的体外实验研究[D]. 甘甜. 昆明医科大学, 2012(11)
- [5]蜂胶生物效应的细胞学机制[J]. 李园,丁仲鹃. 中国组织工程研究与临床康复, 2011(07)
- [6]蜂胶软胶囊增强免疫功能和毒理性研究[D]. 程浩. 南京农业大学, 2010(06)
- [7]中草药的抗诱变作用研究进展[J]. 刘忠平,庞惠民,赵云霄,朱玉琢. 吉林医药学院学报, 2008(05)
- [8]蜂胶的抗肿瘤作用[J]. 冯建新. 养生月刊, 2007(10)
- [9]白头翁水提物的抗诱变作用[D]. 刘忠平. 吉林大学, 2007(02)
- [10]蜂胶抗癌作用研究进展[J]. 张翠平. 中国养蜂, 2005(11)